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OBIETTIVO:
Stabilire lo spettro di sensibilità di un determinato ceppo
microbico a diversi antibiotici. |
PRINCIPIO:
Come nella precedente esperienza (U.D. 4.5), la valutazione della
sensibilità del ceppo microbico in esame a diversi antibiotici,
si effettua misurando il diametro dellalone di inibizione che
si è formato intorno a dischetti contenenti quantità
prestabilite e controllate di antibiotico (tecnica di Kirby-Bauer).
Linterpretazione dei risultati la si ottiene consultando apposite
tabelle che permettono di stabilire se il ceppo microbico è
resistente, intermedio o sensibile ad un determinato antibiotico. |
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MATERIALI
E STRUMENTI:
MATERIALI BIOLOGICI
Colture microbiche di Escherichia Coli, Enterobacter aerogenes
MATERIALI CHIMICI
Standard MacFarland, dischi di antibiotici
TERRENI DI COLTURA
Trypticase Soy broth, Mueller Hinton agar
VETRERIA, ...
Piastre sterili, ansa, provette 16x100, tamponi sterili, pinze mettalliche,
beker 100 ml, righello
STRUMENTI
Bilancia, autoclave, termostato, bunsen
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Standard MacFarland |
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0,5
ml di Bario cloruro 0,048M + 99,5 ml di Acido Solforico 0,35 N (0,99
ml/100ml di acido solforico, 0,117 g/10 ml di Bario Cloruro).
Tale standard corrisponde circa a 108 batteri/ml). La soluzione è
stabile per circa 6 mesi. Agitare prima delluso.
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METODICA
(I
fase)
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Preparare
il brodo. |
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Distribuire
4-5 ml di brodo in ogni provetta.
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Preparare
il terreno Mueller Hinton agar a doppio volume.
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Distribuire
in provettoni con tappo metallico
(40 ml per provettone).
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Sterilizzare
in autoclave a 121°C per 15.
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Piastrare
il terreno Mueller Hinton agar in ambiente sterile.
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(II
FASE II parte)
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Con
lansa, inoculare un ceppo microbico in ogni
provetta contenente il brodo TSB.
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Incubare
le provette a 37° per 18h. |
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(III
fase I parte)
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Standardizzare
linoculo confrontando la torbidità della brodocoltura con quella
dello standard MacFarland, (tale standard corrisponde circa a 108 batteri/ml)
usare brodo sterile per eventuali diluizioni della brodocoltura. |
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(III
FASE II parte)
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Immergere un tampone sterile nella brodocoltura e seminare sulla superficie
del terreno in maniera uniforme, ripetendo loperazione più
volte ruotando la piastra di 60°.
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Entro
15 applicare sulla piastra seminata i dischi di antibiotici mediante
pinze sterili (selezionare gli antibiotici in relazione al tipo di batteri).
Disporre i dischi ad una analoga distanza tra loro.
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Incubare
le piastre a 37° per 16-18 h.
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(IV
FASE)
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Misurare
con un centimetro il diametro degli aloni di inibizione sul fondo della
piastra posta sopra una superficie luminosa. Interpretare i risultati
in base allo schema di lettura.
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| Antibiotico |
Diametro
alone di inibizione
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Resistente
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Moderat.
sensibile
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Sensibile
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| Ampicillina
(AM) (enterococchi, enterobatteri) |
<11
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12-13
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>14
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| Ampicillina
(AM) (stafilicocchi) |
<20
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21-28
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>29
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| Acido
nalidixico (NA) |
<13
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14-18
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>19
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| Eritromicina
(E) |
<13
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14-17
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>18
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| Fosfomicina
(FFL) |
<10
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11-14
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>15
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| Gentamicina
(GM) |
<12
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-------
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>13
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| Penicillina
G (P) (Stafilococchi) |
<20
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21-28
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>29
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Penicillina
G (P)
(Altri microrganismi) |
<11
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12-21
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>22
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